摘要: 目的 开展信号转导及转录激活因子 3(STAT3)蛋白在原核系统内进行表达,筛选出不同诱导温度、IPTG 浓度 下最佳的表达条件,并进行大量表达纯化,获得 STAT3 纯化蛋白,为 STAT3 蛋白功能研究奠定基础。方法 利用大肠杆菌系 统表达 STAT3,转化至 Rosetta-gami (DE3) pLysS、 Rosetta-gami 2 (DE3)、 BL21 (DE3),经 IPTG 诱导表达,优化表达条件。最 后通过 Ni-NTA 琼脂糖纯化树脂纯化和分子排阻层析技术进一步纯化蛋白。结果 将 STAT3 质粒成功转化至 BL21 (DE3) 感受 态细胞并优化出最佳表达条件为 16 ℃、0.2 mM IPTG 诱导 18 h,利用 His 标签与钴亲和层析填料柱结合纯化出目的蛋白,最后 运用 ÄKTA pure 层析系统进一步纯化。结论 成功表达出 STAT3 蛋白,筛选出最佳的诱导条件和蛋白纯化条件,为后续进一 步筛选靶向 STAT3 的天然产物及结构功能研究奠定基础。
摘要:目的 开展信号转导及转录激活因子 3(STAT3)蛋白在原核系统内进行表达,筛选出不同诱导温度、IPTG 浓度 下最佳的表达条件,并进行大量表达纯化,获得 STAT3 纯化蛋白,为 STAT3 蛋白功能研究奠定基础。方法 利用大肠杆菌系 统表达 STAT3,转化至 Rosetta-gami (DE3) pLysS、 Rosetta-gami 2 (DE3)、 BL21 (DE3),经 IPTG 诱导表达,优化表达条件。最 后通过 Ni-NTA 琼脂糖纯化树脂纯化和分子排阻层析技术进一步纯化蛋白。结果 将 STAT3 质粒成功转化至 BL21 (DE3) 感受 态细胞并优化出最佳表达条件为 16 ℃、0.2 mM IPTG 诱导 18 h,利用 His 标签与钴亲和层析填料柱结合纯化出目的蛋白,最后 运用 ÄKTA pure 层析系统进一步纯化。结论 成功表达出 STAT3 蛋白,筛选出最佳的诱导条件和蛋白纯化条件,为后续进一 步筛选靶向 STAT3 的天然产物及结构功能研究奠定基础。
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